CRISPR 101:同源性定向修复

由Chari Cortez.

Chari Cortez.

最初发表2015年3月12日,最后更新2020年7月27日。

DNA病变是DNA的结构或碱基损伤的位点。也许是最有害的病变类型导致DNA链的破裂-双链断裂(DSB)-由于DSB的修复对于基因组稳定性至关重要。DSB可以是由细胞内因素(如核酸酶和反应性氧)或电离辐射和紫外光等外力引起的;然而,这些类型的断裂随机而不可预测。为了提供一些对DNA断裂的位置的控制,科学家们具有工程化的基于质粒的体系,可以在特定位点靶向和切割DNA。无论是什么导致DSB,修复机制以相同的方式函数。

在这篇文章中,我们将描述同源性定向修复的一般机制,重点是修复实验室中的用于基因组改性目的的休息。

HDR修复模板含有与基因组DNA同源的序列中间的特定变化。在Cas9诱导的DSB之后,通过HDR修复突破,该HDR将特定变化引入基因组DNA。

同源定向修复是如何修复DNA双链断裂的?

基因组稳定性需要正确和有效的DSB修复。在真核细胞中,DSB的机械修复主要由两个途径发生:非同源终端连接(NHEJ)和同源性定向修复(HDR)。NHEJ是典型的同源性无关的途径,因为它涉及只有一个到几个互补碱的对准,最多用于重新连接两端,而HDR使用更长的序列同源性来修复DNA病变。

这篇文章的重点是HDR,这是一种更精确的DSB修复机制,因为损坏的DNA供体链和完整的DNA供体链之间需要更高的序列同源性。如果用于修复的DNA模板与DSB的原始DNA序列相同,或者它可以引入具体突变进入受损的DNA。

有四种不同的HDR途径来修复DSB。以下是HDR途径的三个中央步骤:

  1. 将5'结束的DNA链在突破处切除以产生3'突出。这将作为链侵入所需的蛋白质和DNA修复合成引物所需的蛋白质。

  2. 入侵链可以取代同源DNA双链中的一条,并与另一条配对;这导致了被称为置换环(D环)的杂交DNA的形成。这是HDR的定义点。

  3. 然后可以解决重组中间体以完成DNA修复过程

同源性指导修复途径

HDR可以是非保守或保守的。非保守方法由单链退火(SSA)途径组成,易于误差。保守方法以同源供体(如姊妹染色单体、质粒等)对DSB进行准确修复为特征,由三种途径组成:经典双链断裂修复(DSBR)、合成依赖链-退火(SDSA)和断裂诱导修复(BIR)。

经典双链断裂修复(DSBR)

在经典的DSBR途径中,3'结束侵入完整的同源模板以用作DNA修复合成的底漆,最终导致双holliday联结(DHJ)的形成。DHJS是四链支化结构,其当侵入性链的伸长“捕获”并从第二DSB端合成DNA时形成。单个HJS通过两种方式之一通过裂解来解决。查看下图的左分支,每个结分辨率可能发生在交叉股(水平处于紫色箭头)上或在非交叉链(垂直于橙色箭头)上发生。如果分解相似(例如,在交叉链上拆分一个接合点,在非交叉股上的另一个连接处),将发生交叉事件;但是,如果两个HJ以相同的方式解析,则这导致非交叉事件。DSBR是半保守的,因为交叉事件是最常见的。这个动画很好地说明了DSBR路径。

HDR示意图显示了双链断裂,链切除,链中的形成,链形成和DNA Snthesis。这可以使用双链断裂修复或合成依赖性股线退火来解决。

合成依赖的股线退火(SDSA)途径

如上图右支所示,SDSA是保守的,只导致非交叉事件。这意味着所有新合成的序列都出现在同一个分子上。与DSBR不同的是,在SDSA中,随着链入侵和D环的形成,入侵链的新合成部分从模板中被取代,并在DSB的另一端回到非入侵链的加工端。非侵入性链的3 '端被拉长并连接以填补空白,从而完成SDSA。

断裂诱导的修理途径

断裂诱导的修复(BIR)途径

BIR并不表征为DSBR或SDSA,但该途径的一个中心特征是在可以用于修理的DSB处仅存在一个侵入性终端。这种单一侵入性链侵入了同源序列并引发了前导和滞后的链合成,这导致形成一个HJ。该HJ通过切割交叉的股线来解决。虽然该途径可能无法在DSB诱导的基因中靶向或与基于质粒的基因组工程相关的,但它可能具有生物重要性,用于修复染色体末端,其具有能够使DSBR或SDSA的第二端。

同源性定向修复和基因组工程

以质粒为基础的方法诱导DSBs已经在基因组工程中采用了同源重组。锌指核酸酶(Zinc finger nucleases, ZFNs)、TAL效应核酸酶(TAL effector nucleases, TALENs)m和CRISPR都可以引导一个核酸酶引起特定的DSB。创建指南的便利性、系统的速度以及目标的多功能性不仅使基因组工程重新焕发活力,而且使该领域发生了真正的革命。

设计修复模板以创建突变的一般注意事项

HDR模板用于创建特定的突变或插入新元素到一个基因需要一定数量的同源性周围的目标序列将被修改。科学家们最成功地使用了始于crispr诱导的DSB的同源臂。一般来说,该修饰的插入位置应该非常接近DSB,如果可能,最好小于10bp。查看我们的博客帖子提高HDR效率有关“切义距离”如何影响编辑效率的详细信息。

需要注意的重要一点是,一旦引入并修复DSB, CRISPR酶可能会继续切割DNA。只要gRNA靶位点/PAM位点保持完整,Cas9内切酶就会继续切割和修复DNA。如果你试图引入一个非常特定的突变或序列,这种重复的编辑是有问题的。为了解决这个问题,您应该以这样一种方式设计HDR模板,即在修复初始DSB后,最终阻止进一步的Cas9目标。阻止进一步编辑的两种常见方法是突变PAM序列或gRNA种子序列。

质粒DNA或单链供体寡核苷酸(ssodn)是最佳的修复模板?

在设计维修模板时,您预期编辑的大小是一个重要因素。SSDNA模板(称为SSODNS)通常用于较小的修改。小插入/编辑可能需要为每个同源臂短达30-50个基地,但请记住这些数字可能根据您的兴趣点和实验系统而异。通常使用50-80个基础同源臂。不对称的同源性武器(PAM远端36个碱基和PAM近端91个碱基)支持HDR效率高达60% (Corn et al., 2016)。

由于创建长度超过200个碱基的ssodn存在困难,研究人员使用dsDNA质粒模板进行更大的插入,如荧光蛋白或选择盒。vwin德赢娱乐平台这些模板应具有至少800 bp的同源臂。质粒模板的HDR效率普遍较低;为了增加编辑频率,研究人员设计了包含gRNA靶位点的自切割质粒。当Cas酶和适当的gRNA(s)存在时,模板从载体中解放出来。为了避免质粒克隆,科学家也使用pcr生成的长dsDNA模板,但这些模板可能对细胞有毒,从而降低编辑效率。dsDNA模板的另一个缺点是它们能够直接整合到基因组中,复制同源臂序列。

Easi-Crisp.,一种允许研究人员制作大突变以利用SSODNS的好处(Quadros等,2017)的技术。要创建超过200个基础的SSODNS,可以在体外录制编码维修模板的RNA,然后使用逆转录酶来创建互补的SSDNA。EASI-CRISPR在鼠标敲入模型中运行良好,将编辑效率从1-10%的编辑效率增加到25-50%,SSODNS。尽管HDR效率在基因座和实验系统上变化,但SSODN模板通常提供HDR编辑的最高频率。查看我们的博客帖子Easi-Crisp.更多细节。

促进NHEJ的HDR

为了促进更多常见的NHEJ修复机制,使用抑制NHEJ和激活HDR的策略。里斯等。nambiar等。使用了HDR因子,比如Rad变体,比如RAD18.(Nambiar等,2019年)和hRad51(Rees等人,2019年)来激活HDR。抑制剂等CYREN可用于抑制NHEJ (Arnoult等,2017),而aCas9融合到占主导地位的负53bp1均抑制NHEJ并激活HDR(Jayavaradhan等,2019)。

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有用的链接和参考:

想知道更多吗?查看下面的其他资源以获得关于HDR和CRISPR的更深入信息。我们的www.vw011.com 旨在帮助解释基本原则驾驶CRISPRS.和基因组编辑技术。

链接:

一般同源重组参考:

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CRISPR参考:

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  • 通过使用不对称供体DNA通过催化活性和无活性CRESPR-CAS9增强同源性的基因组编辑。Richardson CD等人。Nat生物技术。34(3);(2016)。PubMed.
  • 使用单链DNA模板有效的同源定向修复。Jacobi Sa等。海报在Keystone精密基因组工程中。2017年。
  • EASI-CRISPR:使用LONG SSDNA供体和CRISPR核糖核蛋白携带条件和插入等位基因的小鼠一步生成的鲁棒方法。Quadros RM等人。基因组Biol。18(1);(2017)。PubMed.

注意:Christina Mork有助于更新本文。Marcy Patrick和Mary Tearing有助于写这篇文章。
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